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Academic Year/course: 2021/22

297 - Degree in Optics and Optometry

26812 - Biology


Syllabus Information

Academic Year:
2021/22
Subject:
26812 - Biology
Faculty / School:
100 - Facultad de Ciencias
Degree:
297 - Degree in Optics and Optometry
ECTS:
6.0
Year:
2
Semester:
Second semester
Subject Type:
Basic Education
Module:
---

1. General information

2. Learning goals

3. Assessment (1st and 2nd call)

4. Methodology, learning tasks, syllabus and resources

4.1. Methodological overview

The learning process that has been designed for this subject is based on the following:
This subject is programmed so that the intensification of theoretical knowledge is completed with an eminently practical and applied orientation. Students are expected to know the basic biological concepts related to their future professional activity and to be able to apply them in practice.
To achieve this, the theoretical classes and practical classes are intercalated to optimize the learning process, reducing the time that elapses since students acquire the theoretical knowledge until they apply them in the laboratory. This strategy progressively adapts to the resolution of practical problems that is ultimately the most applied part of the subject and a way to approach students to the situations they would confront in a work in the field of Optics and Optometry.

4.2. Learning tasks

The course includes 6 ECTS organized according to:

- Theory sessions (4,4 ECTS): 44 hours.

 

- Practical seminars (0,2 ECTS): 2 hours.
The seminars aim to deepen the eminently practical aspects of the subject and are designed to foster the interrelation between theoretical and practical learning. Students are divided into groups of 20 to 25 to facilitate greater participation. The following seminars are included:

1.1 Microbiological diagnosis

- Laboratory sessions (1,4 ECTS): 14 hours.

Every student will be informed about the risks that can have the accomplishment of the practices, as well as about the dangerous goods to be used and what to do in case of an accident, and they must sign the commitment to comply with labor and safety standards in order to carry them out. For more information, consult the Information for students of the Unit of Prevention of Occupational Risks: Http://uprl.unizar.es/estudiantes.htm

 

Laboratory practices are organized into two blocks:

 

5.2.1 Biochemical laboratory

•Proteins: Serum protein electrophoresis in cellulose acetate strips.

•Carbohydrates: Starch hydrolysis and determination of reducing sugars.

•Lipids: thin layer chromatography.

•Nucleic acids: Isolation and purification of DNA.

Students will submit a portfolio at the end of the internship, in which a summary of the practices carried out, with the outlines and the complementary documentation they deem appropriate to complement their learning, is presented in a concise and orderly manner. Schemes and / or drawings representing the observations and experiences developed should be included.


5.2.2 Microbiological Laboratory

• Fundamentals and methods of microbiological diagnosis of ocular infections. Collection, transport and storage of samples. Safety rules.

• Microbiological analysis of a conjunctival smear. Direct vision. Culture. Culture media. Identification through biochemical tests. Interpretation of results. Identification of microorganisms of the genera Staphylococcus, Pseudomonas spp. From cultivation. Microscopic Description. Gram stain. Learn to recognize ocular pathogens.

• Antimicrobial susceptibility study: Methods and foundation. Realization and interpretation of an antibiogram by disc diffusion technique.

 

4.3. Syllabus

Biology is concerned with the study of life and living organisms including their structure and function at molecular level. We will study three main areas: Structural Biology of the Cell: from biomolecules to cell structure, Metabolism: chemical reactions in living cells and energy production, and Molecular Genetics.

In addition, it includes the study of ocular infections, and its object is the study of microorganisms that causes these infections in aspects of detection, isolation, identification, mechanisms of colonization and pathogenicity, dissemination and transmission, clinical significance, epidemiology and procedures to control and to treat them and also the biological human response to them. They are considered as microorganisms bacteria, viruses, fungi, protozoa and metazoa.

The course will address the following topics:

PART I: MOLECULAR AND CELULAR BIOLOGY

1. The origin and evolution of cells. Chemical evolution. RNA world.The first cell. The evolution of metabolism. Present day prokaryotes. Eukaryotic cells. The origin of eukaryotes. The development of multicellular organisms. Classification of living organisms.

2. Chemical Components of Cells. Chemical bounds. Carbon compounds. Water. Weak interactions in aqueous systems. Biomolecules.

3. Proteins.  Amino acids. Peptide bonds. Peptides and proteins. The structure of proteins: primary structure. Protein secondary structure. Protein tertiary and quaternary structures. Protein function.

4. Enzymes. The catalytic activity of enzymes. Mechanisms of enzymatic catalysis. Coenzymes. Regulation of enzyme activity.

5. Carbohydrates. Monosaccharides and Disaccharides. Polysaccharides: structure and function. Glycoconjugates: Proteoglycans, glycoproteins and glycolipids.

6. Lipids. Fatty acids. Triacylglicerols. Structural lipids in membranes: Glycerophospholipids, Sphingolipids. Cholesterol: vitamin D and steroid hormones. Dolichols. Eicosanoids.

7. Nucleic Acids. Nucleotides. Other functions of nucleotides. Nucleic acids structure and function. DNA: the double helix. RNA: types. Ribozymes.

8. Eukaryotic cell: Cell membranes.  Cytoplasm. Membrane lipids. Membrane proteins. Cell membrane structure: the phospholipid bilayer. The glycocalix.

9. Transport across membranes: Passive diffusion and carrier proteins. Ion channels. Active transport driven by ATP hydrolysis. Active transport driven by ion gradients. Endocytosis.

10. The endoplasmic reticulum, the Golgi apparatus and lysosomes. Protein sorting and transport. The endoplasmic reticulum and protein secretion. The smooth ER and lipid synthesis. Export of proteins and lipids from the ER. Organization of Golgi. Protein glycosylation within the Golgi. Lipid and polysaccharide metabolism in the Golgi. Protein sorting and export from the Golgi. Vesicular transport. Cargo selection, coat proteins and vesicle budding. Vesicle fusion. Lysosomal acid hydrolases.  Endocytosis and lysosome formation. Phagocytosis and autophagy.

11. The cytoskeleton and cell movement. Structure and organization of actin filaments. Actin, Myosin and Cell movement. Microtubules. Microtubule motors and movement. Intermediate filaments.

12. The nucleus.  The structure of nuclear envelope. Nuclear lamina. The nuclear pore complex. Transport of proteins to and from the nucleus. Transport of RNAs. Chromatin.  The nucleolus and rRNA processing.

13. Mitochondria. Peroxisomes.  Organization and function of mitochondria. Mitochondrial genetic system. Structure and function of peroxisomes.

14. Bioenergetics and Metabolism. Energy, Catalysis, and Biosynthesis.Free energy and ATP. The generation of ATP from glucose, lipids and amino acids. Krebs cycle. The electron transport chain. Chemiosmotic coupling. Cell Communication.

15. Molecular genetics. Chromosomes: centromeres and telomeres. Genomes. Asexual and sexual reproduction. Mendelian inheritance. Genes. Introns and exons. Genetic variation. Mutations. Repetitive DNA sequences. Gene duplication and pseudogenes.

16. From DNA to proteins. DNA replication. DNA repair. DNA transcription. RNA processing. Translation of mRNA. Genetic code. Control of gene expression.

17. The Cell Cycle and Apoptosis. The eukaryotic cell cycle. Regulators of the cell cycle progression. Mitosis. Meiosis. Cell death: necrosis and apoptosis. Programmed cell death.

18. Light induced molecular changes of vision process. Photoreceptor Cells (Rods and Cones). Isomerization of Retinal (11-cis-Retinal vs. All-trans-Retinal). Protein Conformational Changes Resulting from Retinal Isomerization. Signal Transduction Cascade to Generate a Nerve Impulse. Ion channels. Recovery.

 

PART II: MICROBIOLOGY AND DIAGNOSTIC OF OCULAR INFECTIONS

19. Introduction to Microbiology and Parasitology. Historical memory. Current concept and content of the discipline. Discovery of ocular infections. Applications of Microbiology for optical/optometrist.

20. General characteristics of bacteria. Structure and composition of the bacterial cell. Capsule, flagella, fimbriae, glycocalyx. Cellular wall. Cytoplasmic membrane. Cytoplasm. Nuclear equivalent. Bacterial division. Sporulation and germination.

21. Nutrition and microbial growth. Nutrition. Aerobic and anaerobic respiration. Fermentation. Growth and reproduction. Bacterial growth curve.

22. Bacterial Genetics. Mutations. Plasmids, insertion sequences, transposons and integrons. Bacterial transfer and recombination. Transformation, transduction, conjugation, transposition.

23. Microbiology applied to the practice of the optical/optometrist. Action of physical and chemical agents on microorganisms. Disinfection and sterilization. Antiseptics and disinfectants. Terms of use. Biofilms: Deposits, adhesion and growth of microorganisms on contact lenses.

24. Antimicrobials. Classification and mechanisms of action. Study methods of antimicrobial susceptibility. MIC and MBC. Antimicrobial resistance mechanisms. Bases of clinical use of antimicrobials.

25. Relations bacteria-host. Epidemiology and prophilaxis. Microbiota of healthy eye. Bacterial ecology. Pathogenicity and virulence. Determinants of microbial pathogenicity and host defense mechanisms. Epidemiology and prevention of infectious diseases. Epidemiological chain. Exposure and disposal prophylaxis.

26. Ocular infections. Overview and main characteristics of microbial infections. Conjunctivitis, keratitis, endophthalmitis and ocular adnexal infections. Microbiological diagnosis of ocular infections.

27. Bacteria that cause ocular infections. Study of microbiological characteristics, ocular manifestations, prevention and treatment of infections caused by Gram-positive bacteria (Staphylococcus aureus, Streptococcus pyogenes and Streptococcus pneumoniae) and Gram-negative bacteria (Pseudomonas aeruginosa and Neisseria gonorrhoeae).

28. Ocular infections caused by Clamydias. Study of trachoma. Inclusion conjunctivitis and other eye infections. Prevention and treatment.

29. Viruses that cause ocular infections. Nature of the virus. Characteristics of the virus particle. Microbiological study, Ocular manifestations, prevention and treatment of ocular herpes infections, adenovirus and enterovirus.

30. Fungi that produce ocular infections. The fungi. Growth and reproduction. Classification of fungi. Fungi as etiological agents causing eye infections. Features of ocular mycoses. Prevention and treatment.

31. Parasites that cause ocular infections. Study of some protozoa that produce ocular manifestations: Toxoplasma, Acanthamoeba, Onchocerca and Toxocara. Prevention and treatment.

 

4.4. Course planning and calendar

• The theoretical classes will be held on Mondays, Tuesdays and Wednesdays.

• The practical seminars will be carried out when indicated by the corresponding professor.

• Laboratory practices will be held on Mondays, Tuesdays, Wednesdays, Thursdays and Fridays.

• The tutorials will take place in appointments arranged with the corresponding teacher.

• The delivery to the guardian of the report regarding the regulated practices will be concluded after the completion of the same.

• The theoretical exam will be done in the corresponding calls:

1st Call: June

2nd Call: September

For further details concerning the timetable, classroom and further information regarding this course please refer to the "Facultad de Ciencias" website (https://ciencias.unizar.es/calendario-y-horarios) and in the learning platform Moodle within the Biología 26812 course.

 

 

 

4.5. Bibliography and recommended resources

BB

Biología molecular de la célula / Bruce Alberts ... [et al.] ; traducido por Mercé Durfort i Coll, Miquel Llobera i Sande . - 5ª ed. Barcelona : Omega, D.L.2010

BB

Bioquímica : conceptos esenciales / Elena Feduchi Canosa ... [et al.] ; colaboradora Carlota García-Hoz Jiménez. Madrid [etc] : Editorial Médica Panamericana, D.L. 2010

BB

Introducción a la biología celular / Bruce Alberts ... [et al.] . - 3ª ed. México : Editorial Médica Panamericana, 2011

BB

Murray, Patrick R.. Microbiología médica / Patrick R. Murray, Ken S. Rosenthal, Michael A. Pfaller . - 6ª ed. Barcelona [etc.] : Elsevier, D.L. 2009

BB

Nelson, David L.. Lehninger Principios de bioquímica / David L. Nelson, Michael M. Cox ; coordinador de la traducción, Claudi M. Cuchillo. 6ª ed. Barcelona : Omega, D.L. 2014

BB

Nelson, David L.. Lehninger Principios de bioquímica / David L. Nelson, Michael M. Cox ; coordinador de la traducción, Claudi M. Cuchillo. 6ª ed. Barcelona : Omega, D.L. 2014

BB

Pérez-Santonja, Juan J.. Queratitis infecciosas : fundamentos, técnicas diagnósticas y tratamiento / Juan J. Pérez-Santonja, José M. Hervás-Hernandis . Madrid : Ergon, 2006

BB

Seal, David V.. Ocular infection / David Seal, Uwe Pleyer ; with contribuitions from Gregory Booton ... [et al.] . 2nd ed. New York [etc.] : Informa Healthcare, 2007

BB

Tortora, Gerard J.. Introducción a la microbiología / Gerard J. Tortora, Berdell R. Funke, Christine L. Case . - 9ª ed. Buenos Aires [etc.] : Editorial Médica Panamericana, cop. 2007

BB

Willey, Joanne M.. Microbiología / Joanne M. Willey, Linda M. Serwood, Christopher J. Woolverton. 7ª ed. (3ª ed. en español) Madrid [etc.] : McGraw-Hill, cop. 2009

BC

Brock : Biología de los microorganismos / Michael T. Madigan, John M. Martinko, Paul V. Dunlap, David P. Clark ; coordinación Ricardo Guerrero. - 12ª ed. Madrid [etc.] : Pearson Education, 2009


Curso Académico: 2021/22

297 - Graduado en Óptica y Optometría

26812 - Biología


Información del Plan Docente

Año académico:
2021/22
Asignatura:
26812 - Biología
Centro académico:
100 - Facultad de Ciencias
Titulación:
297 - Graduado en Óptica y Optometría
Créditos:
6.0
Curso:
2
Periodo de impartición:
Segundo semestre
Clase de asignatura:
Formación básica
Materia:
Biología

1. Información Básica

1.1. Objetivos de la asignatura

La asignatura y sus resultados previstos responden a los siguientes planteamientos y objetivos:

  1. Conocer la estructura celular y de las moléculas que forman los seres vivos.
  2. Conocer y comprender las reacciones metabólicas de síntesis y transformación de dichas biomoléculas, así como de la obtención de energía en un organismo vivo.
  3. Conocer los mecanismos básicos de transferencia de la información genética en los seres vivos.
  4. Conocer las bases bioquímicas del mecanismo de la visión.
  5. Alcanzar un conocimiento básico de la microbiología aplicada a la clínica humana y los fundamentos clínicos que la sustentan.
  6. Estudiar los microorganismos que intervienen en las infecciones oculares como base para comprender su evolución clínica, tratamiento y prevención.
  7. Conocer y diferenciar los agentes infecciosos implicados en infecciones oculares y sus procedimientos de control.

1.2. Contexto y sentido de la asignatura en la titulación

Esta asignatura se incluye en el módulo Básico de esta titulación, y por tanto, forma parte del grupo de materias que persiguen la formación básica del estudiante. Con esta asignatura, se pretende consolidar y homogeneizar el nivel de conocimientos previos de  Biología con que ingresan los estudiantes en la titulación, al mismo tiempo que los dota de los conocimientos necesarios para desarrollar su futura actividad profesional.

1.3. Recomendaciones para cursar la asignatura

Es conveniente repasar los conocimientos sobre biología general, asistir y participar en las actividades programadas, procurar asimilar de forma progresiva los conocimientos y aprovechar las tutorías para plantear las dudas o problemas relacionados con el aprendizaje.   

2. Competencias y resultados de aprendizaje

2.1. Competencias

Al superar la asignatura, el estudiante será más competente para...

Describir la estructura celular y la función de cada uno de sus componentes.

Conocer y reconocer la estructura de las biomoléculas.

Comprender las reacciones metabólicas de síntesis y transformación de las biomoléculas, así como sus mecanismos de regulación.

Conocer los mecanismos de obtención de energía metabólica.

Comprender las bases moleculares de la herencia.

Conocer las bases bioquímicas de la visión.

Utilizar técnicas básicas de laboratorio bioquímico y microbiológico, e interpretar sus resultados.

Competencias genéricas:

Colaborar en la detección precoz de procesos infecciosos oculares y así prevenir riesgos y secuelas evitables.

Participar de forma directa como educadores sanitarios con capacidad de aplicar los procedimientos de control de los microorganismos en la práctica profesional.

Mantener una comunicación fluida de la información obtenida en sus observaciones con otros profesionales relacionados con la salud ocular y con el público en general.

2.2. Resultados de aprendizaje

El estudiante, para superar esta asignatura, deberá demostrar los siguientes resultados...

Describe la estructura celular y la función de sus diferentes componentes: membrana plasmática, citoesqueleto, ribosomas, mitocondrias, retículo endoplásmico, aparato de Golgi, núcleo, etc.

Identifica y describe la composición y estructura de las biomoléculas, las reacciones metabólicas de transformación y síntesis de dichas biomoléculas, así como los mecanismos de regulación de dichos procesos.

Conoce y comprende los mecanismos de obtención de energía metabólica.

Conoce las bases moleculares del almacenamiento y de la expresión de la herencia genética.

Aplica los conocimientos bioquímicos al globo ocular y al proceso de la visión.

Distingue los microorganismos que causan enfermedades infecciosas oculares al hombre y conoce sus características biológicas más importantes.

En el laboratorio, es capaz de llevar a cabo  técnicas básicas de bioquímica y de microbiología (cultivo, identificación, y visión directa de los microorganismos).

Resultados de aprendizaje transversales:

Conoce los criterios fundamentales de higienización, esterilización y control a distintas escalas para evitar el riesgo de infecciones oculares, sobre todo en usuarios de lentes de contacto.

Conoce los principales grupos de fármacos con actividad antimicrobiana detallando en cada caso los mecanismos de acción y de resistencia.

Sabe adoptar las medidas profilácticas y de control, personales y comunitarias, necesarias para prevenir o limitar la difusión de las infecciones oculares.

2.3. Importancia de los resultados de aprendizaje

Al cursar esta asignatura, los estudiantes adquieren las herramientas y conocimientos necesarios para comprender las bases moleculares de los procesos que tienen lugar en los seres vivos y colaborar en el manejo de pacientes aquejados de enfermedades y/o complicaciones infecciosas oculares, extendiendo el ámbito de su competencia al campo de la salud pública. Por ello se han destacado los resultados de aprendizaje transversales.

 

3. Evaluación

3.1. Tipo de pruebas y su valor sobre la nota final y criterios de evaluación para cada prueba

El estudiante deberá demostrar que ha alcanzado los resultados de aprendizaje previstos mediante las siguientes actividades de evaluacion

- Conceptos teóricos. Se evaluarán los conocimientos teóricos y operativos de la materia con una prueba escrita, mediante examen teórico, que podrá incluir imágenes. El examen teórico contribuirá en un 70% a la calificación final. El examen teórico se aprobará con una calificación igual o mayor que 5 en cada una de las dos partes de la asignatura (Bioquímica y Microbiología) por separado.

-Trabajo autónomo. Las prácticas de laboratorio son obligatorias. Se evaluarán mediante la realización de un portfolio sobre las mismas. Se valorará: la estructura del trabajo, el contenido y la calidad de la documentación, la originalidad, y la presentación.

La presentacion del portfolio contribuirá en un 25% a la calificación final.

- Asistencia y participación en las actividades programadas de enseñanza-aprendizaje teóricas y prácticas. Se tendrá en cuenta la asistencia y participación valoradas por el registro de los profesores. La asistencia y participación contribuirá en un 5% a la calificación final.

 

Finalmente, los alumnos podrán realizar una prueba de evaluación final global, en la que el estudiante deberá demostrar que ha alcanzado todos los objetivos de aprendizaje previstos en la asignatura. Esta evaluación global consistirá en dos pruebas escritas: un examen escrito sobre los conceptos teóricos de la materia, que contribuirá en un 70% a la calificación final, y otro examen escrito sobre los conceptos desarrollados durante las prácticas, que contribuirá en un 30% a la calificación final de la asignatura.

4. Metodología, actividades de aprendizaje, programa y recursos

4.1. Presentación metodológica general

El proceso de aprendizaje que se ha diseñado para esta asignatura se basa en lo siguiente:

Esta asignatura está programada para que la intensificación de conocimientos teóricos se complete con una orientación eminentemente práctica y aplicada. Se pretende que los alumnos conozcan los conceptos biológicos básicos relacionados con su futura actividad profesional y sean capaces de aplicarlos en la práctica.

Para conseguir lo anterior, las clases teóricas y las clases prácticas se intercalan para optimizar el proceso de aprendizaje, reduciendo el tiempo que transcurre desde que los alumnos adquieren los conocimientos teóricos hasta que los aplican en el laboratorio. Esta estrategia, progresivamente, se adapta a la resolución de problemas prácticos que supone en definitiva, la parte más aplicada de la asignatura, y un modo de aproximar a los estudiantes a las situaciones que confrontarían en un trabajo en el ámbito de la Óptica y Optometría.

4.2. Actividades de aprendizaje

 

El programa que se ofrece al estudiante para ayudarle a lograr los resultados previstos comprende las siguientes actividades...

CLASES TEÓRICAS (4,4 ECTS)

 

SEMINARIOS PRÁCTICOS (0,2 ECTS)

Los seminarios tienen por objeto profundizar en aspectos eminentemente prácticos de la asignatura y se han diseñado para propiciar la interrelación entre el aprendizaje teórico y práctico. Los alumnos se dividen en grupos de 20 a 25 para facilitar una mayor participación. Se incluyen los siguientes seminario

1.1          Diagnóstico microbiológico

 

PRÁCTICAS DE LABORATORIO (1,4 ECTS)

 

Todo alumno será informado sobre los riesgos que puede tener la realización de las prácticas de esta asignatura, así como si se manejan productos peligrosos y qué hacer en caso de accidente, y deberá firmar el compromiso a cumplir con las normas de trabajo y seguridad para poder realizarlas. Para más información, consultar la información para estudiantes de la Unidad de Prevención de Riesgos Laborales: http://uprl.unizar.es/estudiantes.html

 

Las prácticas de laboratorio se organizan en dos bloques:

 

5.2.1 Laboratorio bioquímico

  • Proteínas: Electroforesis de proteínas del suero en tiras de acetato de celulosa.
  • Hidratos de carbono: Hidrólisis de almidón y determinación de azúcares reductores.
  • Lípidos: Cromatografía en capa fina.
  • Ácidos nucleicos: Aislamiento y purificación de DNA.

5.2.2 Laboratorio microbiológico

  • Fundamento y métodos de diagnóstico microbiológico de las infecciones oculares. Recogida, transporte y conservación de las muestras. Normas de seguridad.
  • Análisis microbiológico de un frotis conjuntival. Visión directa. Cultivo. Medios de cultivo. Identificación mediante pruebas bioquímicas. Interpretación de resultados. Identificación de microorganismos de los géneros Staphylococcus, Pseudomonas spp. a partir de cultivo. Descripción microscópica. Tinción Gram. Aprender a reconocer los patógenos oculares.
  • Estudio de la sensibilidad a los antimicrobianos: Métodos y fundamento. Realización e interpretación de un antibiograma mediante la técnica de difusión con discos. Lectura interpretada.

 

Los alumnos entregarán un portafolios al finalizar las prácticas, donde figure, de forma concisa y ordenada, un resumen de las prácticas realizadas, con los esquemas y la documentación complementaria que juzguen adecuada para complementar su aprendizaje. Deberán figurar esquemas y/o dibujos que representen las observaciones y experiencias desarrolladas.

Las actividades docentes y de evaluación se llevarán a cabo de modo presencial salvo que, debido a la situación sanitaria, las disposiciones emitidas por las autoridades competentes y por la Universidad de Zaragoza obliguen a realizarlas de forma telemática o semi-telemática con aforos reducidos rotatorios.

4.3. Programa

En las clases teóricas se presentan los conceptos generales de la asignatura. Se abordan los siguientes temas:

PRIMERA PARTE: BIOLOGÍA MOLECULAR Y CELULAR:

Tema 1.- Origen, organización y clasificación de los seres vivos.

Propiedades de los seres vivos. La teoría Celular. Origen de la vida y de las células: evolución química y evolución biológica. Diversidad celular: procariotas y eucariotas. Origen de las células eucariotas. Diversidad de seres vivos: unicelulares y pluricelulares. Especialización metabólica y funcional. Clasificación de los seres vivos.

Tema 2. - Composición química de las células.

Tipos de biomoléculas. Principios básicos de la química del carbono. Propiedades e importancia biológica del agua y de los enlaces débiles. Niveles de organización molecular en la célula.

Tema 3. - Proteínas.

Definición, diversidad de proteínas y sus funciones. Aminoácidos: estructura y propiedades. El enlace peptídico. Niveles estructurales de las proteínas: estructura primaria, secundaria, terciaria y cuaternaria.

Tema 4.- Enzimas.

Los enzimas como biocatalizadores. Características de las enzimas. Clasificación y nomenclatura. Cofactores enzimáticos. ¿Cómo funcionan las enzimas?: concepto de centro activo. Control y regulación de la actividad enzimática: importancia biológica.

Tema 5.- Hidratos de carbono.

Definición, tipos y funciones de los hidratos de carbono. Monosacáridos: cetosas y aldosas. El enlace glucosídico. Disacáridos: sacarosa y lactosa. Homopolisacáridos de reserva y estructurales. Heteropolisacáridos en matriz extracelular y pared celular bacteriana. Los hidratos de carbono como moléculas de señalización celular: glicoproteínas y glucolípidos.

Tema 6.- Lípidos.

Definición, tipos y funciones biológicas de los lípidos. Ácidos grasos. Triacilglicéridos. Fosfoacilglicéridos. Esfingolípidos. Colesterol y sus derivados: vitamina D y hormonas esteroideas. Terpenos: pigmentos vegetales, vitaminas liposolubles y transportadores de electrones. Icosanoides.

Tema 7.- Ácidos nucleicos.

Nucleótidos: estructura, propiedades y funciones. Ácidos nucleicos: DNA y RNAs. Estructura y función del DNA: la doble hélice. Tipos de RNA, estructura  y funciones. Ribozimas.

Tema 8.- La célula eucariota. Membranas celulares.

Estructura general: un atiborrado citoplasma. Funciones de las membranas celulares. Composición química. Estructura de las membranas: modelo del mosaico fluido. Proteínas de membrana. Dinámica de las membranas.

Tema 9. El transporte a través de las membranas.

Difusión pasiva y proteínas transportadoras. Canales iónicos. transporte activo mediado por hidrólisis de ATP.

Tema 10.- Retículo endoplásmico, complejo de Golgi y lisosomas. Rutas endocíticas y secretoras: transporte vesicular. El retículo endoplásmico: rugoso y liso. Síntesis de proteínas Síntesis de lípidos. Estructura, organización y biogénesis del complejo de Golgi   Modificación y distribución de proteínas en el aparato de Golgi. Rutas endocíticas y secretoras: transporte vesicular. Fagocitosis. Endocitosis mediada por receptores.Lisosomas y digestión intracelular.

Tema 11.- Citoesqueleto: forma y movimiento.

Estructura, organización y funciones. Microfilamentos, microtúbulos, filamentos intermedios. Proteínas motoras. Centriolos. Cilios y flagelos.

Tema 12.- Núcleo.

Localización y funciones. Estructura general del núcleo: el núcleo interfásico. Envoltura y lámina nuclear. Poros nucleares. Tráfico nuclear: importación y exportación de proteínas y RNAs. Organización del DNA en el núcleo: eucromatina y heterocromatina. Estructura de los cromosomas. Nucleolo.

Tema 13.- Mitocondrias y cloroplastos. Peroxisomas y Glioxisomas.

Estructura y función de las mitocondrias. Biogénesis de las mitocondrias: transporte de proteínas y lípidos. Plastidios. Estructura y función de los cloroplastos. La clorofila y otros pigmentos. Funciones y biogénesis de los peroxisomas y glioxisomas.

Tema 14.- Introducción al metabolismo. Aspectos generales de las principales rutas metabólicas y señalización celular. Definición y funciones del metabolismo. Catabolismo y anabolismo. Rutas metabólicas: tipos principales de reacciones. Vías catabólicas y generación de energía. Glucolisis y fermentación. Ciclo de Krebs, cadena respiratoria y fosforilación oxidativa. Fotosíntesis. Digestión, absorción y degradación de grasa. Conceptos y modelos básicos de señalización celular.

Tema 15.- Introducción a la genética molecular

Concepto de gen. Reproducción asexual y sexual. Herencia: conceptos básicos y herencia mendeliana. Control de la expresión génica: genotipo y fenotipo. Mecanismos de variación genética.

Tema 16.- Del DNA a las proteínas.

Replicación del DNA y reparación de errores. Transcripción del DNA: síntesis y maduración de los diversos RNAs. Traducción del mRNA: el código genético y la síntesis de proteínas. Modificaciones post-traduccionales. Regulación de la expresión génica.

Tema 17.-  Ciclo celular y Apoptosis

Fases de la vida en una célula. Ciclo celular: fases. Control del ciclo célula: puntos de control y mecanismos de regulación. División celular: mitosis y meiosis. Mecanismos de muerte celular: necrosis y apoptosis. Funciones, características y vías de la apoptosis.

Tema 18. Bioquímica de la visión: captación y transmisión de la señal visual. Recuperación/Acomodación.

 

SEGUNDA PARTE: Microbiología y diagnóstico de las enfermedades infecciosas oculares

Tema 19. INTRODUCCIÓN A LA MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA. Recuerdo histórico. Concepto actual y contenido de la Disciplina. Descubrimiento de las infecciones oculares. Aplicaciones de la Microbiología para un Óptico Optometrista.

Tema 20. CARACTERES GENERALES DE LAS BACTERIAS. Estructura y composición de la célula bacteriana. Cápsula, flagelos, fimbrias, glicocálix. Pared celular. Membrana citoplásmica. Citoplasma. Equivalente nuclear: Genóforo. División bacteriana.  Esporulación y germinación.

Tema 21. NUTRICIÓN Y CRECIMIENTO MICROBIANO. Nutrición. Producción de energía: Respiración aerobia y anaerobia. Fermentación. Crecimiento y reproducción. Curva de crecimiento bacteriano.

Tema 22. GENÉTICA BACTERIANA. Mutaciones. Plásmidos, secuencias de inserción, transposones e integrones. Transferencia y recombinación bacteriana. Transformación, transducción, conjugación, transposición.

Tema 23. CONTROL DE LOS MICROORGANISMOS APLICADO EN LA PRÁCTICA OPTOMÉTRICA. Acción de los agentes físicos y químicos sobre los microorganismos. Desinfección y esterilización. Antisépticos y desinfectantes. Normas de uso. Biopelículas: Depósitos, adherencia y crecimiento de microorganismos en las lentes de contacto.

Tema 24. ANTIMICROBIANOS. Clasificación y mecanismos de acción.  Métodos de estudio de la sensibilidad a antimicrobianos. CIM y CBM. Mecanismos de resistencia a antimicrobianos. Fundamentos de empleo clínico de los antimicrobianos.

Tema 25. RELACIONES HUÉSPED BACTERIA Y FUNDAMENTOS DE EPIDEMIOLOGÍA Y PROFILAXIS. Microbiota del ojo sano. Ecología bacteriana. Patogenicidad y virulencia. Determinantes de patogenicidad microbiana y mecanismos defensivos del huésped. Epidemiología y profilaxis de las enfermedades infecciosas. Cadena epidemiológica. Profilaxis de exposición y de disposición.  

Tema 26. INFECCIONES OCULARES.- Visión general y principales características de las infecciones microbianas. Conjuntivitis, queratitis, endoftalmitis e infecciones de los anejos oculares. Diagnóstico microbiológico de las infecciones oculares.

Tema 27. BACTERIAS QUE PRODUCEN INFECCIONES OCULARES. Estudio de las características microbiológicas, manifestaciones oculares, prevención y tratamiento de las infecciones producidas por bacterias Gram-positivas (Staphylococcus aureus, Streptococcus pyogenes y Streptococcus pneumoniae) y por bacterias Gram-negativas (Pseudomonas aeruginosa y Neisseria gonorrhoeae).

Tema 28. INFECCIONES OCULARES PRODUCIDAS POR CLAMIDIAS.- Estudio del tracoma. Conjuntivitis de inclusión y otras infecciones oculares. Prevención y tratamiento.

Tema 29. VIRUS QUE PRODUCEN INFECCIONES OCULARES. Naturaleza de los virus. Características de la partícula vírica. Estudio microbiológico, manifestaciones oculares, prevención y tratamiento de las infecciones oculares herpéticas, por adenovirus y por enterovirus.

Tema 30. HONGOS QUE PRODUCEN INFECCIONES OCULARES. Los hongos. Crecimiento y reproducción. Clasificación de los hongos. Los hongos como agentes etiológicos productores de infecciones oculares. Características de las micosis oculares. Prevención y tratamiento.

Tema 31. PARASITOS QUE PRODUCEN INFECCIONES OCULARES. Estudio de algunos protozoos que producen manifestaciones oculares: Toxoplasma, Acanthamoeba, Oncocerca y Toxocara. Prevención y tratamiento.

4.4. Planificación de las actividades de aprendizaje y calendario de fechas clave

Calendario de sesiones presenciales y presentación de trabajos

Pendiente de calendario académico y de horarios del curso

  • Las clases teóricas se realizarán los lunes, martes y miércoles.
  • Las seminarios prácticos se realizarán cuando sea indicado por el profesor correspondiente.
  • Las prácticas de laboratorio se realizarán los lunes, martes, miércoles, jueves y viernes.
  • Las tutorías tendrán lugar en citas concertadas con el profesor correspondiente.
  • La entrega al tutor de la memoria relativa a las prácticas regladas será concertada tras la finalización de las mismas.
  • El examen teórico será realizado en las convocatorias correspondientes: 1º Convocatoria: Junio. 2º Convocatoria: Septiembre.

 

PENDIENTE DEL CALENDARIO ACADÉMICO

Clases teóricas y prácticas de laboratorio 

Plazo para presentación de los trabajos escritos

Tutorías (revisión de trabajos presentados)

Prueba escrita

4.5. Bibliografía y recursos recomendados

  • BB Bioquímica : conceptos esenciales / Elena Feduchi Canosa ... [et al.] ; colaboradora Carlota García-Hoz Jiménez. Madrid [etc] : Editorial Médica Panamericana, D.L. 2010
    BB Compendio de microbiología / editores, Juan J. Picazo, José Prieto Prieto . - 2ª ed. Ámsterdam ; Barcelona ; Madrid [etc.] : Elsevier, D.L. 2016
    BB Essential cell biology / Bruce Alberts ... [et al.] . 3rd ed. New York : Garland Science, cop. 2010
    BB Introducción a la biología celular / Bruce Alberts ... [et al.] . 3ª ed. Buenos Aires ; Madrid [etc.] : Editorial Médica Panamericana, cop. 2011
    BB Murray, Patrick R.. Microbiología médica / Patrick R. Murray, Ken S. Rosenthal, Michael A. Pfaller . - 6ª ed. Barcelona [etc.] : Elsevier, D.L. 2009
    BB Nelson, D.L. and Cox, M.M. . Lehninger “Principles of Biochemistry”. 7th edition. W. H. Freeman. 2017
    BC Biología molecular de la célula / Bruce Alberts ... [et al.] ; traducción coordinada por Juan Francisco Montes Castillo, Miquel Llobera i Sande . - 6ª ed. Barcelona : Omega, D.L. 2016
    BC Biología molecular de la célula / Bruce Alberts ... [et al.] ; traducido por Mercé Durfort i Coll, Miquel Llobera i Sande . - 5ª ed. Barcelona : Omega, D.L.2010
    BC Nelson, David L.. Lehninger Principios de bioquímica / David L. Nelson, Michael M. Cox ; coordinador de la traducción, Claudi M. Cuchillo. 6ª ed. Barcelona : Omega, D.L. 2014
    BC Tortora, Gerard J.. Introducción a la microbiología / Gerard J. Tortora, Berdell R. Funke, Christine L. Case . - 9ª ed. Buenos Aires [etc.] : Editorial Médica Panamericana, cop. 2007
    BC Willey, Joanne M.. Microbiología / Joanne M. Willey, Linda M. Serwood, Christopher J. Woolverton. 7ª ed. (3ª ed. en español) Madrid [etc.] : McGraw-Hill, cop. 2009